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NK细胞介导的细胞溶解作用的研究
更新时间:2011-05-31      阅读:2207

前言

自然杀伤细胞(Nature Killer Cells, NK)是骨髓衍化的淋巴细胞,其zui初通过巨大的颗粒性状被识别。NK细胞能自发杀灭多种肿瘤细胞,同时还可保护正常的细胞,从而被认为是癌症的克星。zui重要的是,不管是在胞内还是胞外,NK细胞不需要免疫接种或提前激活,就能够自发溶解特定的肿瘤靶细胞,而T细胞必须要通过抗原递呈细胞的协助才能发挥作用。许多胞内外的实验表明, 除了外渗出和渗入肿瘤组织的能力外,NK细胞还有望具有抗肿瘤的能力。研究发现缺失NK细胞的小鼠在致癌物诱下更容易发产生癌症。另外,缺乏NK细胞的小鼠会持续遭受病毒感染,并很快死亡。很多疾病的发生会伴随NK细胞失控或出现不正常反应,包括移植排斥,糖尿病,各种自身免疫和神经性疾病,再生障碍性贫血或白血球减少症。因此,NK细胞在决定各生理状态和疾病状态中起着举足轻重的作用。同时, 监测NK细胞的细胞溶解活性,不仅可应用于监视癌症、传染病和自身免疫性疾病的免疫活性,而且可应用于搜寻介导细胞溶解效应的蛋白。

测量NK细胞溶解活性的传统标准方法是用51Cr或111In进行放射性标记分析。

在这些分析中,靶细胞被放射性标记,然后与效应细胞混合。在给定时间内(低于四小时)检测放射性同位素的释放(与NK细胞介导的细胞溶解有关)。也可以使用一些非放射性标记方法进行检测,包括流式细胞术,基于ELISA的颗粒酶测量,及利用显微镜进行形态学分析3。

由ACEA 公司及罗氏应用科学部共同开发的实时无标记细胞分析系统xCELLigence,使动态监测NK细胞介导的细胞溶解成为可能。xCELLigence基于阻抗技术(RT-CES®)4,5,贴附于E-Plate的96孔板孔中的细胞,其贴壁能力及相互作用都会导致阻抗发生变化,同时,阻抗的变化与贴壁细胞的数量,大小,形状变化都有关系。相反,向板孔中加入悬浮细胞,因为其不与检测板电阻接触或者只是微弱接触,所以不引起电阻抗变化。因此,NK细胞介导的单层癌细胞细胞溶解效应,可在E-Plate上进行动态的定量监测,而无需对靶细胞进行额外的标记。

材料和方法

细胞

NK 92, NIH 3T3细胞以及试验中用到的所有的癌细胞均购自ATCC,小鼠NK细胞(mNK)由Louisville大学Hui Shao博士提供。所有的细胞均培养在5% CO2,37°C的培养箱中,NK92和mNK细胞在含有2 mM L-谷氨酰胺,1.5g/L碳酸氢钠,0.2 mM肌醇,0.1 mM 2-巯基,0.02 mM叶酸,12.5%马血清,12.5% FBS,100-200 U/ml IL-2重组体的Alpha MEM培养基中培养。其它癌细胞培养在含有5% FBS,1%青霉素,1%螺旋霉素(GIBCO)的RPMI培养基中。NIH 3T3细胞培养在含有10%FBS,1%青霉素,和1%螺旋霉素的DMEM培养基中。

细胞溶解分析

靶细胞接种于96孔E-Plates上,每孔100 μl培养基。使用xCELLigence系统动态监测细胞直到对数期,此时形成了一细胞层(24-34小时,根据实验)。不同浓度的效应细胞直接加入到含有靶细胞的各孔中,效应细胞加入到不含靶细胞的孔作为对照。加入效应细胞后,每隔15分钟记录一次测量结果,连续记录20小时。

细胞形态镜检分析

使用Nikon直立显微镜观察NK细胞介导的细胞溶解效应。加入效应细胞后,当细胞指数(Cell Index)相比对照下降到50%时,取出细胞用80%的固定5分钟,使用Giemsa染色。镜检细胞形态学并用CCD相机进行记录。

实验数据分析

应用xCELLigence系统自带的软件,可对实验全过程,即从接种到细胞溶解,进行显示。通过实时显示时间-E/T(效应细胞与靶细胞比值)的依赖性曲线,可动态监测NK细胞的活性。xCELLigence系统使用细胞指数(Cell Index)表示细胞阻抗。每点的CI值定义为(Rn-Rb)/15,其中Rn表示孔含细胞时的电极阻抗值,Rb是表示孔中只含培养基时的背景阻抗值。

为了对特定点细胞溶解进行定量,通过与对照的参比,特定E/T比率下的细胞溶解百分比以Excel形式输出。

结果和讨论

动态检测NK细胞介导的细胞溶解

利用鼠NK细胞(mNK )及靶细胞NIH 3T3细胞来监测NK细胞介导的细胞溶解活性。在96孔E-Plates板的每孔中接种5,000个NIH3T3细胞作为靶细胞,xCELLigence系统每小时记录生长数据,直到34小时后细胞达到生长期。鼠NK细胞作为效应细胞,以不同的E/T比例直接加入到孔中,动态监测NK细胞介导的细胞溶解过程。如图1A所示,与对照相比,当加入的mNK细胞E/T为15/1的时候,NIH 3T3细胞的细胞指数出现明显的下降。而在效应对照孔中加入YAC细胞(无细胞溶解效应的T细胞),细胞指数没有出现明显的下降。这表明细胞指数的下降是由mNK特异性引起的,并且很有可能是由细胞溶解造成的。mNK细胞能够引起NIH 3T3细胞的时间依赖性溶解,但YAC细胞没有该效果(图1B)。为了进一步证明细胞溶解效应,当细胞溶解达到50%时(添加mNK细胞后8小时),对靶细胞进行镜检。如图1C所示,mNK细胞通过细胞溶解作用很快将靶细胞有效地清理掉,而对照YAC细胞对靶细胞没有任何影响。

总之,使用xCELLigence系统是目前*一种,不需要对靶细胞进行标记或添加任何化学指示物,就能够直接检测NK细胞介导的细胞溶解的方法。另外,该系统可以动态监测整个细胞溶解过程,这是利用基于标记的终点分析法所不能做到的。

图1:动态监测NK细胞介导的细胞溶解

(A) 动态监测 NK细胞介导的NIH3T3细胞溶解。96孔E-Plate板每孔中接种5000个NIH3T3细胞。实时监测细胞粘附,扩散和增殖。细胞接种后34小时,CI值为3,等同于每孔大约10000细胞。每孔加入150,000mNK细胞或YAC细胞(阴性对照),每组三重复孔。(B)mNK细胞的时间依赖性溶解活性。计算特定时刻的细胞溶解活性,用细胞溶解百分比表示{细胞溶解%=(CI对照-CI效应细胞)/CI对照X 100}。(C)mNK细胞作用后的形态学观查。NIH 3T3细胞被mNK细胞特异性细胞溶解后,用Giemsa blue 染色后进行镜检。

定量检测NK细胞介导的细胞溶解

细胞指数与细胞数目有关5,已经被用于定量监测化学物质,如抗癌药引起的细胞毒性。为了检验mNK细胞的活性是否也可以定量分析,用不同比例的效应/靶细胞来检测细胞溶解。利用鼠和人的NK细胞(mNK和NK92)作为效应细胞,NIH 3T3细胞和MCF7细胞(人乳腺癌细胞)分别作为效应细胞的靶细胞。如前所述,96孔 E-Plate板每孔接种5000个靶细胞,并用阻抗系统监测细胞生长。当靶细胞达到生长期,直接加入不同浓度的NK细胞。监测不同E/T比的NK细胞介导的细胞溶解。

如图2所示,向靶细胞中加入mNK或NK92细胞后,与未加效应细胞的对照相比,细胞指数降低了。细胞指数的降低是依赖于E/T比的。细胞溶解过程中,细胞与电极相互作用的降低引起了细胞指数的降低。E/T越大,得到的细胞指数值越小。表明xCELLigence系统支持特异性NK细胞介导的细胞溶解活性的定量分析。而且,通过细胞溶解的动态监测,有助于更深入理解NK细胞介导的杀伤作用的潜在机理。例如对细胞溶解的动态分析,表明NK92细胞比mNK细胞的杀伤能力更强,E/T为4:1或更高时,加入NK92四小时内,90%的MCF7细胞都被溶解,而在相同的时间内加入mNK细胞只引起30%细胞溶解,NK细胞介导的细胞溶解动力学各不相同,表明效应细胞和靶细胞之间的相互作用,本质上是细胞特异性的,而且会有诸多因素的参与,如NK受体和配体的表达,或NK细胞介导的不同细胞溶解机制。

图2:无标记定量分析mNK 和NK92细胞的溶解活性。(A)mNK细胞溶解活性的定量分析。NIH 3T3细胞接种到96孔E-Plate板,使用xCELLigence 系统实时监测,直到CI值达到3,相当于每孔10,000个细胞。将不同浓度的mNK细胞以不同的E/T接种到靶细胞中,并动态监测细胞的溶解活性。利用归一化的细胞指数值表示,即加入mNK细胞得到的细胞指数值与同一孔加入mNK细胞前的细胞指数值的比 。(B) 不同E/T比下mNK的时间依赖性细胞溶解活性。mNK细胞介导的NIH 3T3的细胞溶解百分比的计算方法如图1。时间依赖性细胞溶解活性如图所示。(C)对NK92 细胞溶解活性的进行定量。接种MCF7靶细胞,xCELLigence系统监测细胞生长, NK92细胞以不同E/T比加入到靶细胞中,系统动态监测不同E/T比下的NK92细胞对MCF7的细胞溶解活性。(D)不同E/T比下的时间依赖性NK92细胞的溶解活性。NK92细胞对MCF7的细胞溶解百分比的计算方法如图1。

无标记分析NK细胞对多种靶细胞的细胞溶解活性

利用8种不同的人类癌细胞和NIH 3T3细胞作为靶细胞,测试mNK和NK92的细胞溶解活性,表1和2总结了mNK 和NK92介导的细胞溶解对不同靶细胞的敏感性。NK92对癌细胞具有广谱细胞溶解活性。加入NK92不到8小时就能够达到zui大杀伤活性。图3A对比了NK92细胞对7种癌细胞的敏感性,其中四种靶细胞都出现超过90%的细胞溶解,包括H460, HepG2, Hela和MDA-MB231细胞。相反,mNK细胞介导的细胞溶解比NK92更具有选择性(图3B),参加测试的9种细胞中仅有4种(NIH3T3, A549, Hela, and MDA-MB231)在加入mNK细胞后的12小时内,发生30%以上的溶解。OVCAR4, HT1080, HepG2, H460和MCF7五种细胞没有发生溶解,或只是微弱的溶解(10%)。另外,mNK介导的细胞溶解比NK92要慢得多,加入mNK12小时后才达到zui大值。

综上所述,实验证明,基于阻抗的xCELLigence系统可以用于NK细胞介导的细胞溶解活性的分析,且无需任何标记。人和鼠的NK细胞被用来对9种靶细胞(包括通常使用的人癌细胞)进行了实验。该系统可以对NK细胞介导的细胞溶解进行动态定量分析,无需任何外源标记和额外试剂。而且这种全新的技术提供了全自动在线细胞溶解分析,可以用于大规模的筛选调节NK细胞介导的细胞溶解的化合物或基因。

图3:无标记分析NK细胞介导的多种细胞溶解(A)NK92细胞介导的7种癌细胞溶解。细胞溶解的百分比是通过加入NK92细胞8小时后 计算细胞指数值得到的;此刻细胞溶解达到zui大。(B)mNK细胞介导9种不同细胞溶解。细胞溶解的百分比通过加入mNK后12小时的细胞指数值计算得到的,此时细胞溶解达到zui大。

表1: mNK细胞介导的9种细胞溶解

表2:NK92细胞介导的7种细胞溶解

参考文献

1. Brunner et al. (1968) Quantitative assay for the lytic action of immune lymphoid cells on 51-Crlabelled allogenetic target cells in vitro; inhibition by sioantibody and by drugs. Immunology 14: 181-196

2. Geldhof et al. (1995) Expression of B7-1 by highly metastatic mouse T lymphomas induces optimal natural killer cell-mediated cytotoxicity. Cancer Res. 55: 2730-2733

3. De Meyer et al. (2003) Morphometric analysis of cytolysis in cultured cell monolyaers: a simple and versatile method for the evalustion of the lytic activity and the fate of LAK cells. J. Immunol. Methods 277: 193-211

4. Abassi et al. (2005) Label-free, real-time monitoring of IgE-mediated mast cell activation on microelectronic cell sensor arrays. J. Immunol. Methods 292: 195-205

5. Solly et al. (2004) Application of real-time cell electronic sensing (RT-CES) technology to cellbased assays. Assay Drug Dev. Technol. 2: 363-72

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